产品概述
由艾美捷代理Agrisera推出的抗NBR1(自噬底物NBR1)抗体(货号:AS14 2805) 是一款兔源多克隆抗体,免疫原为拟南芥NBR1蛋白的UBA2结构域(C端第二个泛素结合结构域),与GST标签融合表达(UniProt: Q9SB64,TAIR: AT4G24690)。该抗体以血清形式提供,经冻干处理,每支规格为50 ul。推荐复溶体积为50 ul无菌水,复溶后即为原倍血清。建议分装保存于-20°C,避免反复冻融;开盖前请短暂离心,以防管壁或管盖附着的样本损失。
分子量与识别特性
参数 | 数值
理论分子量(拟南芥) | 75 kDa
表观分子量(WB) | 约100 kDa
免疫原 | NBR1的UBA2结构域(GST融合)
*注:观察到的表观分子量高于理论值,可能与蛋白的翻译后修饰或酸性氨基酸组成导致的SDS-PAGE迁移异常有关,属正常现象。
推荐应用与稀释比例
应用 | 推荐稀释度
免疫定位(IL) | 1 : 1000
蛋白质印迹(WB) | 1 : 500 – 1 : 5000(起始推荐1:1000)
物种反应性详述
反应类型 | 物种
已验证反应性 | 拟南芥(*Arabidopsis thaliana*)、小立碗藓(*Physcomitrium patens*)
预测反应性 | 十字花科(Brassicaceae)各属、玉米(*Zea mays*)
已确认无反应性 | 柑橘(*Citrus sinensis*)、烟草(*Nicotiana tabacum*)
若需检测上述列表外的物种,请联系技术支持评估交叉反应可能性。特别提醒,本抗体在烟草中无信号,不建议用于烟草及相关茄科样本。
蛋白背景与功能定位
NBR1(自噬底物NBR1)是真核生物中保守的选择性自噬受体蛋白,在植物中参与以下过程:
受损细胞器(如叶绿体、线粒体)的选择性降解;
胞内微生物(如病原菌)的自噬性清除;
蛋白聚集体和异常结构蛋白的清除;
特定可溶性蛋白的靶向降解。
NBR1作为自噬适配器(autophagic adapter),通过其C端的UBA结构域识别并结合泛素化底物,同时通过其N端与自噬体标志蛋白ATG8相互作用,将底物递送至自噬体进行降解。NBR1含有两个UBA结构域,但仅C端UBA结构域(UBA2,即免疫原靶向区域)具有泛素结合活性。
实验关键要点与操作建议
1. 提取方法与组织类型(关键):
该抗体的有效检测依赖于特定的提取方法和组织类型,具体操作条件应参考Minina等(2013)发表的方法(详见产品信息引用文献)。
不同组织及处理条件下NBR1蛋白丰度差异显著,建议根据实验体系预实验确定最佳提取方案。
2. Western blot 稀释度优化:
WB稀释范围较宽(1:500–1:5000),具体稀释度需根据样本中NBR1的丰度进行调整。
在自噬诱导条件下(如营养缺乏、氧化胁迫)NBR1表达水平通常上调,可尝试较高稀释度(1:2000–1:5000);在低丰度样本中建议使用1:500–1:1000。
建议设置阳性对照(如拟南芥幼苗总蛋白,经自噬诱导处理)以验证抗体效价。
3. 阳性与阴性对照:
阳性对照:拟南芥野生型幼苗提取物(建议饥饿处理诱导自噬)。
阴性对照:拟南芥*NBR1*敲除突变体(如SALK T-DNA插入株系)或烟草提取物(已知无反应性)。
4. 免疫定位(IL)注意事项:
推荐稀释度1:1000,需配合适当的固定与通透步骤。
在亚细胞定位实验中,建议与自噬体标志物(如ATG8)进行共定位分析,以验证NBR1在自噬过程中的空间分布变化。
应用场景建议
自噬流监测:WB检测NBR1蛋白水平变化,可与ATG8-II/ATG8-I比值变化协同分析,评估自噬活性。
选择性自噬底物鉴定:通过免疫共沉淀或免疫定位,分析NBR1与候选底物的相互作用。
胁迫响应研究:在营养饥饿、盐胁迫、氧化胁迫等条件下检测NBR1表达动态。
储存与防腐剂定制
冻干及复溶后均建议于-20°C保存。如需在最终产品中添加ProClin防腐剂,可另行提出定制要求。
注意事项
1. 本产品为未纯化血清,背景信号可能高于亲和纯化抗体,建议在封闭液(如5%脱脂牛奶或BSA)中延长封闭时间(室温1–2小时或4°C过夜)以降低非特异性结合。
2. 复溶后请勿在4°C长期存放,血清成分在冷藏条件下易发生沉淀或微生物污染。
总结
AS14 2805 抗体是研究植物选择性自噬的重要工具,特异性靶向拟南芥NBR1的泛素结合功能结构域UBA2。其已验证拟南芥和小立碗藓中的反应性,并预测适用于十字花科及玉米。实验成功的关键在于采用文献指定的提取方法和组织类型,并根据样本丰度灵活调整WB稀释度。该抗体不适用于烟草和柑橘,请在选择物种时注意排除。如需详细实验方案或特殊物种验证,请参考完整产品说明书或联系技术支持团队。
文献参考:
González-Fuente et al. (2026). Bacteria use P-body condensates to attenuate host translation during infection. Sci Adv . 2026 Apr 24;12(17):eaec4477. doi: 10.1126/sciadv.aec4477.
Guan et al. (2025).Arabidopsis phospholipase Dζ2 facilitates vacuolar acidification and autophagy under phosphorus starvation by interacting with VATD. Cell Rep. 2025 Jul 15;44(7):116024. doi: 10.1016/j.celrep.2025.116024.
Hoffman-Sommer et al. (2025). The TRAPPC8/TRS85 subunit of the Arabidopsis TRAPPIII tethering complex regulates endoplasmic reticulum function and autophagy. Plant Physiol. 2025 Mar 1;197(3):kiaf042. doi: 10.1093/plphys/kiaf042.

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