在细胞生长与代谢调控网络中,mTOR信号通路处于核心枢纽地位。其中mTORC2复合物因其对雷帕霉素不敏感且功能独特,近年来成为肿瘤代谢与发育生物学的研究热点。Rictor(Rapamycin-Insensitive Companion of mTOR)作为mTORC2特有的支架蛋白,不仅是复合物组装的结构基础,更是调控AKT、SGK1和PKCα磷酸化的关键亚基。针对这一靶点的特异性检测,需要抗体具备明确的表位定位和广泛的应用兼容性。本文介绍由艾美捷代理Bethyl推出的亲和纯化的兔抗Rictor多克隆抗体(货号A300-459A),并围绕其抗原设计、应用性能及实验要点进行技术解析。
1. 抗原设计与产品特性
该抗体为兔源多克隆IgG,采用抗原亲和纯化工艺制备。其免疫原靶向人源Rictor蛋白的C末端区域,具体位于第1650至1708位氨基酸之间(对应TrEMBL Q6R327编号序列)。这一设计具有重要功能意义——Rictor的C末端结构域是mTOR与Rictor结合所必需的区域,也是mTORC2复合物组装的关键界面。选择该区域作为抗原表位,确保了抗体能够识别组装状态下的mTORC2复合物中的Rictor,同时避免与mTORC1特有的Raptor亚基发生交叉反应。
抗体以1000 ?g/mL浓度保存于Tris-枸橼酸盐/磷酸盐缓冲液(pH 7-8)中,含0.09%叠氮钠作为防腐剂,2-8°C条件下可稳定保存一年。经比尔定律校准,1 mg/mL IgG在280 nm处吸光值为1.4,确保了批次间浓度的一致性。
2. 多平台应用与推荐稀释方案
本抗体经验证适用于免疫组织化学(IHC)、免疫沉淀(IP)及蛋白质印迹(WB),覆盖了从组织学定位到蛋白互作分析的主要研究场景。
蛋白质印迹(WB):推荐稀释范围为1:2,000至1:10,000。Rictor理论分子量约为192 kDa,属高分子量蛋白,建议使用4-8% SDS-PAGE凝胶进行电泳分离,并采用PVDF膜进行湿转(建议转膜时间延长至2小时或使用低电压过夜转移以提高大分子蛋白的转印效率)。封闭和抗体稀释需使用含5%脱脂牛奶的TBST,一抗需4°C孵育过夜以确保低丰度信号的有效检出。检测细胞裂解液时推荐使用抗兔IgG重轻链二抗(A120-101P);而检测免疫沉淀复合物时,为避免变性IgG重链信号(约55 kDa)干扰目标条带(192 kDa,两者相差较大,实际干扰风险较低,但仍建议根据实验需求选择轻链特异性二抗),可在封闭体系中添加5%正常猪血清以降低背景。
免疫组织化学(IHC):推荐稀释区间为1:500至1:2,000。针对福尔马林固定石蜡包埋(FFPE)组织切片,推荐使用枸橼酸盐缓冲液(pH 6.0)进行热诱导抗原修复。鉴于Rictor为胞质定位蛋白,染色阳性信号主要分布于细胞质,建议配合适当的核复染以辅助形态学定位。
免疫沉淀(IP):具体用量为每毫克总蛋白裂解液使用6 ?g抗体。该用量经优化可在非变性条件下有效富集Rictor及其互作的mTORC2复合物组分(包括mTOR、mLST8、Sin1等),适用于下游的激酶活性分析或磷酸化底物检测。
3. 靶点生物学与实验应用场景
Rictor是mTORC2复合物的核心支架蛋白,该复合物对雷帕霉素不敏感,主要响应生长因子信号,通过直接磷酸化AKT1的Ser473位点促进其完全活化。此外,mTORC2还调控SGK1(Ser422)和PKCα(Ser657)的磷酸化,参与细胞骨架重构(通过Rho GTPases通路)和细胞存活信号转导。
该抗体的典型应用场景包括:
mTORC2复合物组装验证:通过IP-WB联合分析,在Rictor敲除或过表达体系中检测mTORC2各亚基的共沉淀情况;
信号通路激活状态分析:结合p-AKT(Ser473)和总AKT抗体,评估mTORC2在不同刺激条件(如生长因子诱导、营养剥夺等)下的活性变化;
组织表达谱鉴定:利用IHC检测Rictor在不同组织类型或病理样本中的表达定位和丰度差异。
4. 操作要点与注意事项
Rictor为大分子量蛋白(192 kDa),WB检测时建议使用低浓度SDS-PAGE凝胶及延长转膜时间,或采用半干转膜仪配合高电流参数以确保有效转移;
该抗体识别人和小鼠Rictor,跨物种实验前无需额外验证,可直接应用于鼠源样本检测;
叠氮钠的存在可能干扰某些偶联反应,如需进行抗体标记,建议先通过透析或脱盐柱去除叠氮钠;
IHC实验中,由于Rictor在部分组织中表达水平较低,建议设置阳性对照(如HeLa细胞或小鼠脑组织切片)以确认染色体系的有效性。
综上所述,这款兔抗Rictor多克隆抗体凭借其C末端特异性抗原设计、明确的应用稀释方案以及针对高分子量蛋白检测的技术优化建议,为深入探究mTORC2复合物的生物学功能及信号调控机制提供了可靠的检测工具。

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