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ViraBind腺病毒微量制备试剂盒--免超离离心柱式腺病毒快速纯化系统

发布者:艾美捷科技    发布时间:2026-09-04     
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一、产品概述与技术革新

由艾美捷代理Cell Biolabs推出的ViraBind腺病毒微量制备试剂盒(货号VPK-099,10次制备规格)是一款基于离心柱法的快速腺病毒纯化工具,专为从细胞培养上清中高效捕获和纯化重组腺病毒颗粒设计。重组腺病毒凭借宿主范围广(可感染多种哺乳动物细胞,包括增殖与非增殖细胞)、不整合宿主基因组(避免原癌基因激活或抑癌基因失活)、可高效表达重组蛋白及递送RNAi等优势,已成为基因治疗、疫苗研发和基础研究中广泛应用的病毒载体系统。然而,传统腺病毒纯化依赖CsCl超速离心结合透析脱盐,操作耗时长达16-24小时,且需要昂贵的超速离心机设备,限制了实验室通量和可及性。

 

本试剂盒利用腺病毒衣壳蛋白的独特表面特性,通过离心柱特异性捕获病毒颗粒,完全规避了超速离心步骤,将整个纯化流程缩短至约30分钟。每根离心柱设计用于纯化来自一个T75培养瓶或10 cm培养皿的病毒收获液,柱容量高达1.0×1011病毒颗粒(VPs),病毒回收率超过95%。每套试剂可支持10次制备。

 

二、适用场景与核心优势

本试剂盒适用于以下典型研究场景:

1.重组腺病毒快速小量制备:适用于从HEK 293细胞中扩增病毒后,快速获取高纯度病毒原液用于感染预实验或功能验证

2.多个病毒株并行纯化:离心柱形式支持同时处理多个样本,适合突变体筛选或表达优化

3.下游应用的前处理:纯化后的病毒可直接用于细胞感染、动物注射或滴度测定(可配套QuickTiter腺病毒滴度免疫检测试剂盒,VPK-109)

 

核心优势:

省时高效:总操作时间约30分钟,相比CsCl法的16-24小时,效率提升超过30倍

高回收率:>95%的病毒回收率,最大限度减少珍贵样本损失

操作简便:无需超速离心机,常规台式离心机即可完成,降低设备门槛

高纯度产出:离心柱特异性捕获去除细胞蛋白和培养基组分,避免CsCl残留对下游细胞实验的干扰

 

三、操作流程与关键参数

核心步骤:

从感染重组腺病毒的HEK 293细胞培养物中收获病毒上清(建议先低速离心去除细胞碎片)

将上清与上样缓冲液混合后转移至ViraBind离心柱,利用衣壳蛋白特性使病毒结合于柱基质

以洗涤缓冲液漂洗离心柱,去除未结合的细胞蛋白、DNA及培养基杂质

用洗脱缓冲液(含高盐Tris-Mg2+体系)将高浓度病毒从柱上洗脱收集

纯化病毒可直接使用或补充甘油后于-80°C长期保存

 

关键质控点:

上样前细胞碎片需充分去除(建议3000 rpm离心5分钟或0.45 ?m过滤),防止堵塞柱床影响结合效率

离心步骤需严格按说明书推荐速度和时间操作,过速或过久可能损伤病毒结构

洗脱步骤建议采用多次小体积洗脱(如2×150 uL)以最大化回收率

若后续进行动物注射实验,建议洗脱后透析或稀释以降低高盐缓冲液对动物的潜在影响

 

四、试剂盒组分与自备材料

提供组分(室温运输与保存):

ViraBind离心柱及收集管:10根迷你离心柱 + 20支收集管

上样缓冲液10 mL

洗涤缓冲液20 mL

洗脱缓冲液10 mL(25 mM Tris pH 7.5,2.5 mM MgCl?,1 M NaCl)

 

需自备材料:

重组腺病毒感染的HEK 293细胞及培养物

细胞培养离心机(低速,用于去除细胞碎片)

微量离心机(≥8,000 rpm,用于柱离心操作)

甘油(用于病毒长期保存,建议终浓度10-15%)

 

储存要点:全试剂盒组分于室温(15-30°C)密封保存,避免高温或阳光直射。使用前各组分无需特殊预处理,直接平衡至室温即可。使用后未用完的缓冲液应盖紧瓶盖,防止污染或蒸发。

 

五、配套产品推荐

建议搭配以下产品构建完整的腺病毒工作流程:

AD-100:293AD细胞系(高贴壁性能,适合腺病毒扩增)

AD-200:ViraDuctin腺病毒转导试剂(提高转导效率,尤其针对难感染细胞)

VPK-109:QuickTiter腺病毒滴度免疫检测试剂盒(纯化后快速测定功能性滴度)

VPK-111:快速RCA检测试剂盒(检测复制型腺病毒污染,确保产品质量安全)

VPK-252:RAPAd CMV腺病毒表达系统(从构建到扩增的全流程方案)

 

纯化后的病毒建议分装保存于-80°C(含10%甘油),避免反复冻融导致滴度下降。首次使用本试剂盒时建议以感染复数(MOI)验证回收病毒的功能活性,确保纯化工艺未影响病毒感染能力。对于需更高病毒量的应用(如动物体内实验),可采用多次制备合并或配合超滤浓缩步骤。

 

文献参考

1. Stewart, P. L., Fuller, S. D., and Burnett, R. M. (1993) EMBO J. 12, 2589-2599.

2. Robbins, P. D., Tahara, H., and Ghivizzani, S. C. (1998) Trends Biotechnol. 16, 35-40.

3. Huang, S., Stupack, D., Mathias, P., Wang, Y., and Nemerow, G. (1997) Proc. Natl. Acad. Sci.U. S. A. 94, 8156-8161.

4. Bergelson, J. M., J. A. Cunningham, G. Droguett, E. A. Kurt-Jones, A. Krithivas, J. S. Hong, M. S.Horwitz, R. L. Crowell, and R. W. Finberg. (1997) Science 275:1320-1323.

5. Von Seggern, D. J., C. Y. Chiu, S. K. Fleck, P. L. Stewart, and G. R. Nemerow. (1999) J. Virol.73:1601-1608.

6. Kleinerman, D. I., W. W. Zhang, S. H. Lin, N. T. Van, A. C. von Eschenbach, and J. T. Hsieh.(1995) Cancer Res. 55:2831-2836.


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