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Cas9 ELISA检测试剂盒,高灵敏RNP转染效率评估

发布者:艾美捷科技    发布时间:2026-09-03     
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产品概述

由艾美捷代理Cell Biolabs推出的Cas9 ELISA检测试剂盒(货号:PRB-5079)提供了一套简便的夹心酶联免疫方法,用于定量检测化脓性链球菌来源的Cas9蛋白。本试剂盒采用96孔板形式,通过特异性抗体捕获和检测,实现Cas9蛋白的精准定量。每套试剂盒可完成96次检测(含标准品、空白对照及待测样品),适用于基因编辑实验中Cas9表达水平的系统评估。

 

Cas9蛋白的生物学意义

Cas9(CRISPR相关蛋白9)是一种RNA引导的DNA核酸内切酶,与CRISPR适应性免疫系统相关联,广泛存在于包括化脓性链球菌在内的多种细菌中。Cas9能够解旋外源DNA(如质粒DNA或入侵噬菌体DNA),随后识别与引导RNA中20碱基对间隔区序列互补的靶位点。当DNA底物与引导RNA互补时,Cas9即切割入侵DNA。

近年来,Cas9蛋白作为基因组工程工具引发全球关注,能够在DNA上产生定点双链断裂。由此产生的DNA断裂可通过非同源末端连接使基因失活,或通过同源重组引入异源基因——这两种策略已在多种实验室模式生物中成功实现。由于Cas9几乎可以切割与其引导RNA序列互补的任何序列,CRISPR/Cas9系统在人细胞中的基因敲除和基因替换均已得到验证。因此,在基因编辑实验中准确定量Cas9蛋白表达水平,对于优化编辑效率、监控递送效果及评估脱靶风险具有重要意义。

 

检测原理

本试剂盒采用双抗体夹心ELISA法:将抗Cas9捕获抗体预包被于96孔板,样品及标准品中的Cas9蛋白与捕获抗体结合;随后加入生物素标记的抗Cas9检测抗体,形成抗体-抗原-抗体夹心复合物;再以链霉亲和素-酶结合物催化底物显色。显色强度与样品中Cas9蛋白浓度成正比,通过与重组Cas9标准品比较实现定量。

 

试剂盒组分与储存

本试剂盒包含两个运输包装,收到后请按要求储存:

Box 1(室温运输)

抗Cas9抗体预包被板:96孔可拆卸板条

生物素化抗Cas9抗体(1000×):10 uL

链霉亲和素-酶结合物:20 uL

检测稀释液:50 mL

10× 洗涤缓冲液:100 mL

底物溶液:12 mL(琥珀色瓶)

终止液:12 mL

Box 2(蓝冰运输)

Cas9标准品:50 uL,5 ug/mL(重组化脓性链球菌Cas9)

 

储存要求: Cas9标准品于-80℃分装保存,避免反复冻融;生物素化抗Cas9抗体于-20℃保存;其余组分于4℃保存。

 

需自备材料

细胞或组织裂解液(建议使用RIPA缓冲液制备)

含0.1% BSA的PBS

 

操作流程

1. 样品制备

细胞或组织样本以RIPA缓冲液裂解,离心取上清

使用含0.1% BSA的PBS稀释样品,建议进行预实验确定最佳稀释倍数

2. 标准曲线配制

以检测稀释液稀释Cas9标准品(5 ?g/mL),制备系列浓度梯度

建议浓度范围:0.01-5 ng/mL,每浓度设2个复孔

3. 孵育与洗涤

每孔加入100 ?L样品或标准品,室温孵育1-2小时

洗涤3-5次,每次300 uL 1×洗涤缓冲液

加入生物素化检测抗体,室温孵育1小时,洗涤

加入链霉亲和素-酶结合物,室温孵育30分钟,洗涤

4. 显色与终止

每孔加入100 uL底物溶液,室温避光孵育

待标准品孔出现明显颜色梯度后(通常5-20分钟),每孔加入100 uL终止液

以酶标仪读取450 nm吸光度

 

数据解读与质控建议

1. 标准曲线:每次实验重新配制标准品,确保R? ≥ 0.99

2. 样品稀释:若样品OD值超出标准曲线上限,需进一步稀释后重新检测

3. 回收率验证:建议在部分样品中添加已知量Cas9标准品进行加标回收实验,回收率应在80%-120%之间

4. 非特异性结合:以检测稀释液作为空白对照,用于扣除背景

 

应用场景

本试剂盒适用于:CRISPR/Cas9基因编辑实验中Cas9蛋白表达水平的定量检测;不同递送系统(质粒、mRNA、RNP复合物)递送效率的比较评估;Cas9融合蛋白的表达验证;以及基因编辑实验条件优化中Cas9蛋白量的标准化控制。配套的GFP和RFP定量及ELISA试剂盒可联合用于报告基因系统的全面评估。

 

文献参考

1. Heler, R; Samai, P; Modell, J. W.; Weiner, C; Goldberg, G. W.; Bikard, D; Marraffini, L. A.(2015). Nature. 519 :199–202.

2. Jinek, M.; Chylinski, K.; Fonfara, I.; Hauer, M.; Doudna, J. A.; Charpentier, E. (2012). Science.337: 816–821.

3. Mali, Prashant; Esvelt, Kevin M; Church, George M (2013). Nature Meth. 10: 957-963.

4. Mali, Prashant; Aach, John; Stranges, P Benjamin; Esvelt, Kevin M; Moosburner, Mark; Kosuri,Sriram; Yang, Luhan; Church, George M (2013). Nature Biotech. 31: 833-838.

5. Gilbert, Luke A.; Larson, Matthew H.; Morsut, Leonardo; Liu, Zairan; Brar, Gloria A.; Torres,Sandra E.; Stern-Ginossar, Noam; Brandman, Onn; Whitehead, Evan H.; Doudna, Jennifer A.;Lim, Wendell A.; Weissman, Jonathan S.; Qi, Lei S. (2013). Cell. 154: 442-451.

6. Zheng Q, Cai X, Tan MH, Schaffert S, Arnold CP, Gong X, Chen C-Z, and Huang S. (2014)BioTechniques 57:115-124.


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