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丙型肝炎病毒核心抗原HCVcAg ELISA试剂盒

发布者:艾美捷科技    发布时间:2021-06-11     
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2020年诺贝尔生理学或医学奖的获奖.jpg

 

你可能不知道,我们常听的丙型肝炎病毒(HepatitisCvirus,HCV),会成为2020年诺贝尔生理学或医学奖的获奖研究主题。

 

那么什么是HCV呢?

 

丙型肝炎病毒(HCV)是1989年美国科学家分子生物学方法,鉴定出来的不同于甲肝和乙肝的新型病毒。由于HCV基因组在结构和表型特征上与人黄病毒和瘟病毒相类似,将其归为黄病毒科HCV。 HCV病毒体呈球形,直径小于80nm,为单股正链RNA病毒,在核衣壳外包绕含脂质的囊膜,囊膜上有剌突。

 

据世界卫生组织统计,全球HCV的感染率约为3%,估计约1.8亿人感染了HCV,每年新发丙型肝炎病例约3.5万例。丙型肝炎呈全球性流行,可导致肝脏慢性炎症坏死和纤维化,部分患者可发展为肝硬化甚至肝细胞癌(HCC)。未来20年内与HCV感染相关的死亡率(肝衰竭及肝细胞癌导致的死亡)将继续增加,对患者的健康和生命危害极大,已成为严重的社会和公共卫生问题。

 

作为专业的生命科学医药原料供应商,Cell Biolabs中国区金牌代理,艾美捷科技为您推荐:《丙肝病毒核心抗原(HCVcAg)ELISA检测试剂盒》

 

HCVcAg 标准曲线.jpg

Fig. HCVcAg 标准曲线


名称丙肝病毒核心抗原(HCVcAg)ELISA检测试剂盒
QuickTiter HCV Core Antigen ELISA Kit
货号VPK-151(96次)
品牌

CellBiolabs.jpg

检测方法比色法
检测范围1.56 ng/ml - 100 ng/ml
说明书下载点击下载
实验原理抗HCVcAg单克隆涂层抗体被吸附到微量滴定板上。样品或标准品中存在的HCV核心抗原与吸附在板上的抗体结合;添加FITC偶联的小鼠抗HCVcAg抗体并与第一抗体捕获的抗原结合。
在孵育和洗涤步骤之后,添加HRP偶联的小鼠抗FITC抗体并与FITC偶联的抗HCVcAg结合。未结合的HRP偶联的小鼠抗FITC抗体是
在洗涤步骤中去除,并将与HRP反应的底物溶液加入孔中。
有色产物的形成与样品中存在的HCV核心抗原的量成比例。加入酸终止反应,并在450nm处测量吸光度。根据重组HCV核心抗原制备标准曲线,然后确定样品浓度。
试剂盒组分#第一部分#
1. Anti-HCVcAg Antibody Coated Plate
2. FITC-Conjugated Anti-HCVcAg Monoclonal Antibody
3. HRP-Conjugated Anti-FITC Monoclonal Antibody
4. Assay Diluent
5. Triton X-100 Solution
6. 10X Wash Buffer
7. Substrate Solution
8. Stop Solution
#第二部分#
1. Recombinant HCVcAg Standard
保存条件收到后,将重组HCVcAg标准品分装并保存在-20℃,以避免多次冷冻/解冻循环。将所有其他试剂盒成分保存在4℃。

* 本产品仅适用于科研用途.

 

实验步骤:详见说明书描述

注意事项对于含有抗HCVcAg抗体的样品,为了从病毒体中释放HCVcAg并使抗HCVcAg抗体失活,样品应在56下孵育30分钟

 

发表文章:

Kong, L. et al. (2021). The synthetic opioid fentanyl enhances viral replication in vitro.?PLoS One.?16(4):e0249581. doi: 10.1371/journal.pone.0249581.

Hammerstad, S.S. et al. (2019). Hepatitis C virus infection of human thyrocytes: metabolic, hormonal, and immunological implications.?J Clin Endocrinol Metab. pii: dgz241. doi: 10.1210/clinem/dgz241.

Blackard, J.T. et al. (2019). CCR5 receptor antagonism inhibits hepatitis C virus (HCV) replication in vitro.?PLoS One.?14(10):e0224523. doi: 10.1371/journal.pone.0224523.

Plissonnier, M.L. et al. (2019). LARP1 binding to hepatitis C virus particles is correlated with intracellular retention of viral infectivity.?Virus Res. doi: 10.1016/j.virusres.2019.197679.

Kumar, S. et al. (2019). MARCH8 Ubiquitinates the Hepatitis C Virus Nonstructural 2 Protein and Mediates Viral Envelopment.?Cell Rep.?26(7):1800-1814.e5. doi: 10.1016/j.celrep.2019.01.075.

Hassan, R. et al. (2018). Role of Hepatitis C Virus Core Antigen Assay in Blood Donors Screening at Zagazig University Hospitals.?Afro-Egyptian Journal of Infectious and Endemic Diseases.?8(1):48-54. doi: 10.21608/aeji.2018.8735.

Xiao, F. et al. (2018). Interactions between the Hepatitis C Virus Nonstructural 2 Protein and Host Adaptor Proteins 1 and 4 Orchestrate Virus Release.?MBio.?9(2). pii: e02233-17. doi: 10.1128/mBio.02233-17.

Blackard, J.T. et al. (2017). A preliminary analysis of hepatitis C virus in pancreatic islet cells.?Virol J.?14(1):237. doi: 10.1186/s12985-017-0905-3.

Dvir, R. et al. (2017). Autoimmune hepatitis and occult HCV infection: A prospective single-centre clinical study.?Autoimmun Rev. doi: 10.1016/j.autrev.2017.01.015.

Owolabi, O. B. et al. (2015). Hepatitis C virus?seroprevalence,?antigaenemia?and associated risk factors among pregnant women in Nigeria.?Ethiop?Med J.?53.

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Jittavisutthikul, S. et al. (2015).?Humanized-VHH?transbodies?that inhibit?HCV?protease and replication.?Viruses.?7:2030-2056.

Amet, T. et al. (2014). BST-2 expression in human?hepatocytes?is inducible by all three types of?interferons?and restricts production of hepatitis C virus.?Curr?Mol?Med.?14:349-360.

Kong, L. et al. (2014). HIV infection of?hepatocytes?results in a modest increase in hepatitis C virus expression in vitro.?PLoS?One.?9:e83728.

Carpentier, A. et al. (2014). Engrafted human stem cell–derived?hepatocytes?establish an infectious?HCV?murine?model.?J?Clin?Invest.?124:4953-4964.

Deng, A. et al. (2014). Human immunodeficiency virus type 1?Vpr?increases hepatitis C virus RNA replication in cell culture.?Virus Res.?184:93-102.

 

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