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Worthington丨艾美捷代理新生儿心肌细胞分离系统,助力心脏研究

发布者:艾美捷科技    发布时间:2025-10-14     
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在心血管疾病研究、药物心脏毒性评估以及心脏发育生物学等前沿领域,获取高纯度、高活性的功能性心肌细胞是实验成功的基石。其中,新生儿大鼠心肌细胞因其仍保留一定的增殖能力,且能较好地在体外模拟心脏的生理与病理状态,而成为备受青睐的模型。然而,传统的心肌细胞分离方法常常面临诸多挑战:流程繁琐、耗时漫长,且不同批次间分离效果差异显著,严重影响了实验的可重复性与数据的可靠性。

 

为解决这一难题,新生儿心肌细胞分离系统(货号:WBC-LK003300)应运而生。这是一种经过精心设计和严格验证的标准化工具包,旨在为研究人员提供一种可靠、便捷且结果一致的新生儿大鼠心肌细胞分离方法。

 

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一、可靠性与一致性的核心保障

该系统的卓越性能,源于其在两个关键环节的严格把控:

1、使用纯化酶制剂:与使用粗制酶的传统方法不同,该系统采用了经过高度纯化的胰蛋白酶和胶原酶。粗制酶中常含有各种杂酶和杂质,其活性和成分批次间差异大,是导致细胞得率与活性不稳定的主要元凶。而纯化酶制剂最大限度地减少了这种批间差异,确保了每次分离实验都能在高度一致的酶解条件下进行。

2、严格的性能验证:每一批次的试剂盒在出厂前,都经过了实际应用的“使用测试”。制造商使用该套系统亲自从新生儿大鼠心脏中分离心肌细胞,以确证其性能、可靠性以及所获得活细胞数量的稳定性。这种“以身试法”的质量控制体系,为研究者提供了强有力的信心保障。

 

二、科学原理与流程优化

该系统的方法学建立在坚实的科学研究基础之上。它基于Toraason等人发表的方法,并与Ronal MacGregor博士合作完成配方优化。其核心技术在于一个独特的 “冷消化” 步骤:

将剪碎的心脏组织与纯化的胰蛋白酶在2-8°C的低温环境下共同孵育过夜。这一巧妙的设计带来了显著的优势:

大幅减少手动操作时间:与传统方法中需要在温热的胰蛋白酶或胶原酶中进行多次、连续的孵育和吹打相比,漫长的冷消化过程由仪器自动控温完成,极大地解放了研究人员的双手,简化了工作流程。

温和而高效:低温下,胰蛋白酶主要作用于细胞间的连接,而不会立即对细胞本身造成剧烈损伤。这种温和、缓慢的消化方式有助于在后续步骤中释放出更多完整性好、活性高的细胞。

在冷消化之后,系统使用纯化的胶原酶 来进一步解离组织,最大化地提高最终细胞的总得率和存活率。

 

三、系统组件详解:一个完整的“工具箱”

该试剂盒设计周到,包含了进行五次独立组织解离实验(每次最多可处理12个心脏)所需的全部组件:

Vial 1:无菌Hank‘s平衡盐溶液(CMF HBSS):一瓶500ml的钙镁离子游离溶液,pH 7.4。它用途广泛,既是用于重构其他冻干粉试剂的溶剂,也是整个解离过程中的基础培养基。

Vial 2:纯化胰蛋白酶(TRLS):5小瓶,每瓶1000?g。该胰蛋白酶经过3X重结晶、透析,并通过0.22微米滤膜过滤和冻干处理,纯度极高。使用前需用2ml Vial 1中的CMF HBSS重构。

Vial 3:大豆胰蛋白酶抑制剂(SIC):5小瓶,每瓶2000?g。同样为0.22微米过滤的冻干粉。其作用是在冷消化结束后迅速终止胰蛋白酶的活性,防止过度消化损伤细胞。使用前用1ml CMF HBSS重构。

Vial 4:纯化胶原酶(CLSPA):5小瓶,每瓶1500单位。这是经过色谱纯化的胶原酶,酪蛋白酶杂质含量极低,确保了其解离作用的专一性和高效性。使用前需用5ml Leibovitz L-15培养基进行重构。

Leibovitz L-15 培养基粉末:1包,可配制1升。附有详细的配制说明,需用细胞培养级水溶解并定容后,经0.22微米滤膜无菌过滤方可使用。

 

此外,试剂盒还贴心地附带了5个细胞筛网(Cell Strainer),用于在分离末期滤除细胞团块和杂质,收集单细胞悬液;以及一张酚红颜色与pH值对照卡,方便研究人员快速判断溶液酸碱度。

 

四、广泛的应用生态与未来展望

该新生儿心肌细胞分离系统并非孤立存在,其制造商还提供一系列相关的酶制品(如不同型号的胶原酶、中性蛋白酶、胰蛋白酶等)以及其他特定细胞类型的分离系统(如肝细胞分离系统、木瓜蛋白酶解离系统等)。这为研究者构建了一个完整的技术平台,允许他们根据不同的实验需求,灵活选择或优化细胞分离方案。

 

总结而言,这款新生儿心肌细胞分离系统通过其标准化的试剂、经过验证的流程和用户友好的设计,成功地将复杂且易变的心肌细胞分离工作,转化为一个高效、可控的标准化流程。它不仅显著提升了实验的重复性和效率,降低了人为操作误差和技术门槛,更是为推动心脏相关领域的科学研究走向深入与精准,提供了不可或缺的强大工具。

 

参考文献:

Engelmann, G. , McTiernan, C. , Gerrity, R. and Samarel, A., Technique 2 , 279 , 1990

 

Freshney, R. Ian., Culture of Animal Cells A Manual of Basic Technique, 4th ed. , Wiley-Liss, Inc., New York , 2000

 

Gross, W. , Schopf-Ebner, E. and Bucher, O.

Technique for the Preparation of Homogeneous Cultures of Isolated Heart Muscle Cells , Exp Cell Res 53 , 1 , 1968


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