ADAR1活性双荧光素酶报告基因HEK293细胞系是一种设计用来同时监测细胞活力和ADAR1(作用于RNA的腺苷脱氨酶)酶活性的HEK293细胞系。这些细胞被改造以表达ADAR1(NM_001111.5)和一个ADAR1报告基因构建体。该构建体包含一个带有终止密码子(UAG)的ADAR1发夹靶标,该终止密码子易受到ADAR1介导的编辑成色氨酸(UUG),位于荧光素酶报告基因的上游。此外,它们在CMV启动子的控制下恒定表达Renilla荧光素酶,这可以用来确定细胞活力(图1)。
该细胞系已通过ADAR1 siRNA处理和ADAR1抑制剂Fludarabine处理进行了验证。
图1:ADAR1活性双荧光素酶报告基因HEK293细胞系的作用机制图示。
ADAR1报告基因构建体包含一个带有终止密码子(UAG)的ADAR1发夹靶标,位于编码荧光素酶的序列上游。在没有ADAR1的情况下,荧光素酶不会被转录,细胞不显示荧光素酶活性。然而,这些细胞被改造以表达ADAR1,将腺嘌呤转换成肌苷,现在编码氨基酸色氨酸(UUG),使得荧光素酶的转录和表达成为可能。因此,ADAR1活性与荧光素酶活性直接相关。Renilla荧光素酶从另一个独立的构建体中恒定表达,因此Renilla荧光素酶活性与细胞数量相关,但与ADAR1活性无关。
背景
ADAR(作用于RNA的腺苷脱氨酶)酶在RNA中执行腺苷到肌苷的碱基编辑,特别针对位于特定双链茎环结构中的腺苷。在健康的未感染细胞中,ADAR1对内源性双链RNA进行A到I编辑以防止其激活下游的dsRNA传感器RIG-I(视黄酸诱导基因I)和MDA5(黑色素瘤分化相关蛋白5),进而激活促炎症反应。ADAR1功能丧失突变导致dsRNA传感器异常激活,并涉及自身免疫性疾病。ADAR1功能障碍也影响癌细胞生长、增殖和对免疫疗法的反应。ADAR1在许多肿瘤类型中表达增加,ADAR1敲除已被证明可以改善对某些免疫疗法的反应,如PD-1(程序性死亡蛋白1)/PD-L1(程序性死亡配体1)阻断,并可绕过肿瘤免疫疗法抵抗机制,使ADAR1成为治疗开发的理想靶标。
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ADAR1 活性双荧光素酶报告基因 HEK293 细胞系 | BPS-82240 | 查看 |
应用
? 监测ADAR1活性。
? 研究化合物对ADAR1活性的影响。
? 同时测量化合物对ADAR1活性和细胞活力的影响。
细胞复苏
1. 在37°C水浴中旋转冷冻细胞瓶大约60秒。细胞解冻后(可能比60秒稍快或稍慢),迅速将瓶内的全部内容转移到含有10毫升预热的解冻培养基1的管中。
注意:在37°C水浴中放置细胞过久会导致细胞活力迅速下降。
2. 立即以300 x g的速度离心细胞5分钟,去除培养基,并在5毫升预热的解冻培养基1中重悬细胞。
3. 将重悬的细胞转移到T25或T75培养瓶中,并在37°C、5% CO2培养箱中培养。
4. 培养24小时后,检查细胞附着和活力。更换为新鲜的解冻培养基1,并继续在37°C、5% CO2培养箱中培养,直到细胞准备好传代。
5. 在细胞完全融合之前应进行传代。在第一次传代及后续传代中,使用生长培养基1Y。
细胞传代
1. 吸去培养基,用不含Ca2+/Mg2+的磷酸盐缓冲液(PBS)洗涤细胞,并用0.05%胰蛋白酶/EDTA从培养容器中分离细胞。
2. 一旦细胞分离,加入生长培养基1Y并转移到管中。
3. 以300 x g的速度离心细胞5分钟,去除培养基,并在生长培养基1Y中重悬细胞。
4. 按推荐的亚培养比例1:5至1:10每周一次或两次播种到新的培养容器中。
细胞冷冻
1. 吸去培养基,用不含Ca2+/Mg2+的PBS洗涤细胞,并用0.05%胰蛋白酶/EDTA从培养容器中分离细胞。
2. 一旦细胞分离,加入生长培养基1Y并计数细胞。
3. 以300 x g的速度离心细胞5分钟,去除培养基,并在4°C细胞冷冻培养基(BPS Bioscience #79796)中重悬细胞,浓度约为1 x 10^6细胞/毫升。
4. 将1毫升细胞悬浮液分装到每个冷冻管中。将管放入绝缘容器中缓慢冷却,并在-80°C下过夜储存。
5. 次日将管转移到液氮中进行长期储存。
注意:建议在早期传代扩展细胞并至少冷冻10管细胞以备将来使用。
图:ADAR1活性双荧光素酶报告基因HEK293细胞系中ADAR1活性被ADAR1靶向siRNA抑制。
细胞被转染ADAR1靶向siRNA 24小时。培养基被更换为新培养基,然后细胞再孵化48小时。使用双步荧光素酶(荧光素酶&Renilla)检测系统测量了荧光素酶和Renilla荧光素酶活性。结果以标准化发光(左图)和百分比标准化发光(右图)与未经siRNA处理的细胞(设为100%)进行比较。
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